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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Comportamento celular e resposta antioxidante diferenciados de Saccharomyces cerevisiae e de Saccharomyces chevalieri ao metavanadato de amónio]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The fermentation of wine is a complex microbiological process which requires yeast adaptation to stress conditions. In the cellular environment of aerobic organisms naturally reactive oxygen species (ROS) occurs as by-products of mitochondrial respiration. The higher reactivity of these chemical species could cause molecular damages that in several cases induce cellular death. In common physiological conditions or as response to oxidative stress, the cell can generate adapted responses which involve antioxidants mechanisms as glutathione reductase (GR; EC 1.6.4.2) and catalase T (CAT T; EC 1.11.1.6) and A (CAT A; EC 1.11.1.6) enzymes. Vanadium, a heavy metal present in several pesticides could generate ROS changing the intracellular redox state and cause deleterious effects in yeasts exposed to higher levels of this element. The main objective of this work was to compare the effects of ammonium metavanadate (NH4VO3), a pentavalent salt of vanadium on cellular viability and GR, CAT T and CAT A activities of wine yeast Saccharomyces cerevisiae UE-ME3 and Saccharomyces chevalieri UE-ME1. The results obtained show that S. chevalieri UE-ME1 has lower tolerance to NH4VO3 than S. cerevisiae UE-ME3, since S. chevalieri cultures do not survive to concentration values of ammonium metavanadate higher than 7,5 mM, whereas S. cerevisiae cells are still viable in the presence of 75 mM. S. chevalieri has an enzymatic activity lower than S. cerevisiae, although for both yeast species NH4VO3 could behave as oxidative stress inductor, causing a significant decrease of GR activity (P<0,01) and a significant increase of CAT A activity (P<0,01). The results show also an increase of CAT T activity in both yeast species, which can be interpreted as a protective response to oxidative stress. Differences on response to amonium metavanadate by both species of Saccharomyces could be partially justified by more efficient antioxidant systems in S. cerevisiae UE-ME3.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b>Comportamento celular e resposta antioxidante diferenciados    de <i>Saccharomyces cerevisiae</i> e de <i>Saccharomyces chevalieri</i> ao metavanadato    de amónio </b></p>     <p align="center"><b>Different cellular behaviour and antioxidant response of    <i>Saccharomyces cerevisiae</i> and Saccharomyces chevalieri growing in presence    of ammonium metavanadate </b></p>     <p>&nbsp;</p>     <P align="center">R. Ferreira <Sup><a href="#1">1</a><a name="top1"></a></Sup>,    I. Alves-Pereira <Sup><a href="#1">1</a><a name="top1"></a>,<a href="#2">2</a><a name="top2"></a></Sup>,    S. Magriço <Sup><a href="#2">2</a><a name="top2"></a></Sup>, C. Ferraz-Franco<Sup><a href="#2">2</a><a name="top2"></a>    </Sup></P>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b>RESUMO</b></p>     <p align="justify">A fermentação do vinho é um processo microbiológico complexo    que requere a presença de leveduras adaptadas a condições de stresse. No ambiente    celular de organismos aeróbios ocorrem naturalmente espécies reactivas de oxigénio    (ROS) como subprodutos da respiração mitocondrial. A elevada reactividade destas    espécies químicas pode gerar danos moleculares que, em alguns casos, levam à    morte celular. Em condições fisiológicas normais ou como resposta ao stresse    oxidativo, a célula pode desencadear respostas adaptativas que envolvem mecanismos    antioxidantes como os enzimas glutationo redutase (GR; EC 1.6.4.2) e catalases    T (CAT T; EC 1.11.1.6) e A (CAT A; EC 1.11.1.6). </P>     <p align="justify">O vanádio, um metal pesado presente em alguns fitofármacos,    pode também com portar-se como um gerador de ROS, alterando o estado redox intracelular    e exercendo efeitos nocivos em leveduras expostas a quantidade excessiva deste    elemento. O principal objectivo deste trabalho foi comparar o efeito do metavanadato    de amónio (NH4VO3), um sal pentavalente de vanádio, na viabilidade celular e    nas actividades enzimáticas GR, CAT T e CAT A das leveduras vínicas <i>Saccharomyces    cerevisiae</i> UE-ME3 e <i>Saccharomyces chevalieri</i> UE-ME1. </P>     <p align="justify">Os resultados obtidos mostram que <i>S. chevalieri</i> UE-ME1    revelou menor tolerância ao NH4VO3 do que <i>S. cerevisiae</i> UE-ME3, uma vez    que culturas de <i>S. chevalieri</i> não sobreviveram para valores de concentração    do sal de vanádio superiores a 7,5 mM enquanto que células de <i>S. cerevisiae</i>    mantiveram-se viáveis em presença de metavanadato de amónio 75 mM. As actividades    enzimáticas estudadas apresentaram em <i>S. chevalieri</i> valores muito inferiores    aos que foram determinados em <i>S. cerevisiae</i> embora em ambas as espécies    de levedura o NH4VO3 pareça comportarse como um indutor de stresse oxidativo    ao provocar um decréscimo significativo da actividade GR (P&lt;0,01) e um aumento    significativo da actividade CAT A (P&lt;0,01). Observou-se, ainda, nas duas    espécies de levedura, um aumento da actividade enzimática CAT T, tida como resposta    adaptativa protectora ao stresse oxidativo. O comportamento diferenciado de    adaptação à presença de metavanadato de amónio pelas duas espécies de <i>Saccharomyces</i>    pode ser parcialmente justificado pela presença de sistemas antioxidantes mais    eficientes em <i>S. cerevisiae</i> UE-ME3. </P>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><b>ABSTRACT </b></p>     <p align="justify">The fermentation of wine is a complex microbiological process    which requires yeast adaptation to stress conditions. In the cellular environment    of aerobic organisms naturally reactive oxygen species (ROS) occurs as by-products    of mitochondrial respiration. The higher reactivity of these chemical species    could cause molecular damages that in several cases induce cellular death. In    common physiological conditions or as response to oxidative stress, the cell    can generate adapted responses which involve antioxidants mechanisms as glutathione    reductase (GR; EC 1.6.4.2) and catalase T (CAT T; EC 1.11.1.6) and A (CAT A;    EC 1.11.1.6) enzymes. </P>     <p align="justify">Vanadium, a heavy metal present in several pesticides could    generate ROS changing the intracellular redox state and cause deleterious effects    in yeasts exposed to higher levels of this element. The main objective of this    work was to compare the effects of ammonium metavanadate (NH4VO3), a pentavalent    salt of vanadium on cellular viability and GR, CAT T and CAT A activities of    wine yeast <i>Saccharomyces cerevisiae</i> UE-ME3 and <i>Saccharomyces chevalieri</i>    UE-ME1. </P>     <p align="justify">The results obtained show that <i>S. chevalieri</i> UE-ME1    has lower tolerance to NH4VO3 than <i>S. cerevisiae</i> UE-ME3, since <i>S.    chevalieri</i> cultures do not survive to concentration values of ammonium metavanadate    higher than 7,5 mM, whereas <i>S. cerevisiae</i> cells are still viable in the    presence of 75 mM. <i>S. chevalieri</i> has an enzymatic activity lower than    <i>S. cerevisiae</i>, although for both yeast species NH4VO3 could behave as    oxidative stress inductor, causing a significant decrease of GR activity (P&lt;0,01)    and a significant increase of CAT A activity (P&lt;0,01). The results show also    an increase of CAT T activity in both yeast species, which can be interpreted    as a protective response to oxidative stress. Differences on response to amonium    metavanadate by both species of <i>Saccharomyces</i> could be partially justified    by more efficient antioxidant systems in <i>S. cerevisiae</i> UE-ME3. </P>     <p>&nbsp;</p>     <p>Texto completo disponível apenas em PDF.</p>     <p>Full text only available in PDF format.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><b>REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS </b></p>     <!-- ref --><p>Barceloux, D. G. 1999. Vanadium, <i>J. Toxicol. Clin. Toxicol.</i>, <b>37</b>:265-278.  &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000022&pid=S0871-018X200700010004800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>Barnett, J. A. 1998. A history of research on yeast 1: Work by Chemists and    Biologists. <i>Yeast</i>, <b>14</b>: 1439-1451. </P>     <p>Bataillon, M., Rico, A., Sablayrolles J.-M., Salmon J.-M. &amp; Barre, P. 1996.    Early thiamin assimilation by yeasts under enological conditions: Impact on    alcoholic fermentation kinetics. <i>Journal of Fermentation and Bioengineering</i>,    <b>82</b>: 145-150. </P>     <p>Bauer, F.F. &amp; Pretorius, J. S. 2000. Yeast stress response and fermentation    efficiency: how to survive the making of wine – a review. <i>J. Afr. J. Enol.</i>,    <b>21</b>: 27-51. </P>     <p>Buschini, A., Poli, P. &amp; Rossi, C. 2003. <i>Saccharomyces cerevisiae</i>    as an eukaryotic cell model to assess cytotoxicity and genotoxicity of three    anticancer anthraquinones. <i>Mutagenesis</i>, <b>18</b>: 25-36. </P>     <p>Cabiscol, E., Piulats, E., Echave P., Herrero E. &amp; Ros J. 2000. Oxidative    Stress Promotes Specific Protein Damage in <i>Saccharomyces cerevisiae. Journal    of Biological Chemistry</i>, <b>275</b>: 27393-27398. </P>     <p>Carmel-Harel O., Stearman R., Gasch A. P., Botstein D., Brown P. O. &amp; Storz    G. 2001. Role of thioredoxin reductase in the Yap1p-dependent response to oxidative    stress in <i>Saccharomyces cerevisiae</i>. <i>Mol Microbiol</i>, <b>39</b>:    595-605. </P>     <p>Carrasco, P., Querol A. &amp; del Olmo M. 2001. Analysis of the stress resistance    of commercial wine yeast strains. <i>Arch Microbiol.</i> <b>175</b>: 450-457.  </P>     <p>Cooper, J. M. 2000. <i>The cell: A molecular approach.</i> Sunderland, London,    GB. </P>     <p>Costa, V. &amp; Moradas-Ferreira, P. 2001. Oxidative stress and signal transdution    in <i>Saccharomyces cerevisiae</i>: insights into ageing, apoptosis and diseases.    <i>Molecular Aspects of Medicin</i>, <b>22</b>: 217-246. </P>     <p>Davidson, J. F., Whyt, B., Bissinger, P. H. &amp; Schiestl, R. H. 1996. Oxidative    stress is involved in heat-induced cell death in <i>Saccharomyces cerevisiae.    Proc. Natl. Acad. Sci. USA Microbiology</i>, <b>93</b>: 5116-5121. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Dumond, H., Danielou N., Pinto M. &amp; Bolotin-Fukuhara M. 2000. A large-scale    study of Yap1p-dependent genes in normal aerobic and H2O2-stress conditions:    the role of Yap1p in cell proliferation control in yeast. <i>Mol. Microbiol</i>,    <b>36</b>: 830-845. </P>     <p>Franca, M. B., Panek, A. D. &amp; Eleutherio, E. C. 2005. The role of cytoplasmic    catalase in dehydration tolerance of <i>Saccharomyces cerevisiae. Cell Stress    Chaperones</i>, <b>10</b>: 167-70 </P>     <p>Frazier, W. C. 1972. <i>Microbiologia de los alimentos.</i> W. C. Brown Publishers,    London </P>     <P>Golberg, D. M. &amp; Spooner, R. J. 1987. Glutathione reductase. <i>In</i>    Bergmeyer (eds) <i>Methods of Enzymatic Analyses</i>, pp.259-271. VCH, New York.  </P>      <P>Grant, C. M. 2001. Role of glutathione/glutaredoxin and thioredoxin systems in  yeast growth and response to stress conditions. <i>Molecular Microbiology</i>,  <b>39</b>: 533-541.</P>       <P>Grant, C. M., Maclver, F. H. & Dawes I. W. 1997. Mitochondrial function is  required for resistance to oxidative stress in the yeast <i>Saccharomyces cerevisiae.  FEBS Letters</i>, <b>410</b>: 219-222.</P>       <P>Huang, C., Zhang, Z. & Shi, X. 2000. Vanadate induces p53 transactivation  trough hydrogen peroxide and causes apoptosis. <i>Journal of Biological Chemistry</i>,  <b>259</b>: 13273-13281.</P>       <P>Jamieson, D. J. 1998. Oxidative stress responses of yeast <i>Saccharomyces cerevisiae.  Yeast</i> <b>14</b>: 1511-1527</P>       <P>Lapinskas, P., Ruis, H. & Culotta, V. 1993. Regulation of <i>Saccharomyces cerevisiae</i>  catalase gene expression by copper. <i>Current Genetics</i>, <b>24</b>: 388-393 </P>      <P>Lee, J., Godon, C., Lagniel,G., Spector, D., Garini, J., Labarre, J. & Toledano,  M. B. 1999. Yap1 and Skn7 Control Two Specialized Oxidative Stress Response Regulons  in Yeast. <i>The Journal of Biological Chemistry</i>, <b>274</b>: 16040–16046.</P>       ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Lima, N. & Mota, M. 2003. <i>Biotecnologia: Fundamentos e aplicações.</i> LIDEL-Edições  Técnicas Lda, Lisboa </P>      <P>Lowry, O. H., Rosenbrough, N. J., Farr, L. & Randall, R. J. 1951. Protein Measure  with the Folin Phenol Reagent. <i>J. Biol. Chem.</i> <b>193</b>: 265-275.</P>       <P>Lushchak, V. I. & Gospodaryov, D. V. 2005. Catalases protect cellular proteins  from oxidative modification in <i>Saccharomyces cerevisiae. Cell Biol Int.</i>,  <b>29</b>: 187-92. </P>      <P>Rossignol, T., Dulau L., Julien A. & Blondin B. 2003. Genome-wide monitoring  of wine yeast gene expression during alcoholic fermentation. <i>Yeast</i>, <b>20</b>: 1369-85.</P>       <P>Scandalios, J. G. 2005. Oxidative stress: molecular perception and transduction  of signals triggering antioxidant gene defenses. Braz J Med Biol Res., <b>38</b>: 995-1014.</P>       <P>Sokal, R. R. & Rohlf, F. J. 1997. <i>Biometry.</i> W. H. Freeman, New York.</P>       <P>Tran, L.-T., Miki, T., Kamakura, M., Izawa, S., Tsujimoto, Y., Maybe, S., Inoue,  Y. & Kimura, A. 1995. Oxidative Stress Response in Yeast, Induction of Glucose-6-Phosphate  Dehydrogenase by Lipid Hydroperoxide in <i>Hansenula mrakii. Journal of Fermentation  and Bioengineering</i>, <b>80</b>: 606-609.</P>       <P>Van Uden, N. 1967. Transport-limited fermentation and growth of <i>Saccharomyces  cerevisiae</i> and competitive inhibition. <i>Arch. Microbiol.</i>, <b>58</b>: 155-168.</P>       <p>&nbsp;</p>     <p><Sup><a href="#top1">1</a><a name="1"></a></Sup> Instituto de Ciências Agrárias    Mediterrânicas (ICAM), Universidade de Évora, Apartado 94, 7002554 Évora; e-mail:    <a href="mailto:raf@uevora.pt">raf@uevora.pt</a>; <Sup><a href="#top2">2</a><a name="2"></a></Sup>    Departamento de Química, Universidade de Évora, </P>     ]]></body>
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