Grapevine virus infection at Biscoitos (Terceira island) - Azores

Arícia Figueiredo¹, Isabel Cortez², Ana Maria Nazaré Pereira²

RESUMO

A região dos Biscoitos na ilha Terceira, nos Açores, é mundialmente conhecida pela vinha em curraletas destinada à produção de Vinhos Licorosos de Qualidade Produzidos em Região Demarcada (VLQPRD). As castas predominantes são Verdelho branco e Verdelho roxo mas também estão presentes Terrantez, Arinto e Boal branco.

Um dos objectivos do projecto Interfruta-II é avaliar o actual estado sanitário destas videiras em relação aos principais vírus. Assim, em Fevereiro de 2006, foi realizada uma prospecção em sete vinhas tendo sido analisados por ELISA os vírus GLRaV-1, GLRaV-2, GLRaV-3, GLRaV-7, GFLV, ArMV, GVA, GVB e GFkV.

Os resultados são analisados por casta e vinha. No global mostram que a infecção por GLRaV-3 atinge os 100% e que a infecção por um ou dois Nepovirus é superior a 50%. Os restantes vírus foram detectados em menor percentagem. Existe elevada percentagem de infecções mistas. Atendendo ao prejudicial efeito qualitativo e/ou quantitativo das infecções detectadas, é apresentada uma estratégia de intervenção fitossanitária pretendendo contribuir para a recuperação da vinha nos Biscoitos.

Palavras-chave: Açores, protecção de plantas, vírus, urticado, enrolamento.

At Terceira island in Azores, the region Biscoitos is well known by its vineyards in typical “curraletas”. The grapevines are for the production of VLQPRD (i.e. Quality Liquorus Wines Produced in Demarcated Region). The predominant varieties are Verdelho branco and Verdelho roxo but also Terrantez, Arinto and Boal branco are present.

One of the objectives of the project Interfruta-II is the evaluation of the actual sanitary status of those grapevines in relation to the main viruses. Therefore, in February 2006, a survey was done in seven vineyards evaluating by ELISA the virus GLRaV-1, GLRaV-2, GLRaV-3, GLRaV-7, GFLV, ArMV, GVA, GVB and GFkV.

The results are analyzed by vineyard and by variety. In general they show that infection by GLRaV-3 is 100% and that infection by one or two Nepovirus is above 50%. The other viruses were detected in lower percentages. Mixed infections were also relevant. Because of the qualitative and/or quantitative deleterious effect of the infections detected, a phytosanitary strategy will be presented in order to contribute for the recuperation of the grapevine in Biscoitos region.

Key-words: Azores, plant protection, virus, fanleaf, leafroll.

INTRODUÇÃO

A região dos Biscoitos na ilha Terceira nos Açores é mundialmente conhecida pela vinha em curraletas destinada à produção de Vinhos Licorosos de Qualidade Produzidos em Região Demarcada (VLQPRD). As castas predominantes são Verdelho branco e Verdelho roxo mas também estão presentes Terrantez, Arinto e Boal branco.

Vários estudos, há muito publicados, referiam a presença dos nemátodes vectores do vírus do urticado da videira nas ilhas de S. Miguel e Terceira nos Açores (Sequeira e Dias, 1964; Sturhan, 1973; Bravo, 1983; Lamberti et al., 1994; Bravo & Lemos, 1997). Testes serológicos aí realizados nos anos 80-90 do século passado evidenciam também a importância do vírus do urticado da videira nessas ilhas (Lamberti et al, 1994).

Quadro 1 – Caracterização dos vírus da videira prospectados.

MATERIAL E MÉTODOS

Em Fevereiro de 2006 foi realizada uma prospecção em sete vinhas nos Biscoitos (ilha Terceira). A amostragem teve em conta a predominância das castas. Em cada vinha, e por curraleta, foi marcada uma videira e, em cada videira, foram colhidas duas varas em zonas opostas da planta. Foram colhidas no total 300 varas de 150 videiras. As varas foram mantidas a 4ºC até serem testadas. Os testes ELISA-Enzyme linked immunosorbent assay (antissoros AGRITEST, SRL, Bari, Itália) foram realizados na UTAD entre Maio e Outubro de 2006. Cada amostra consistiu em lenho de uma vara (de cada videira foram analisadas duas varas, correspondendo a duas amostras). Cada uma foi testada em duplicado, em placas Nunc immunoplate Maxisorp, usando 100µL/alvéolo, extracto 1:10 p/v em tampão Tris-HCl, pH 8,2, ao qual foi adicionado 2% PVP, 1% PEG e 0,05% Tween20. O substrato cromogénico da fosfatase alcalina foi p-nitrofenil fosfato sendo consideradas positivas as amostras com absorvância a 405nm superior a três vezes a absorvância dos controlos negativos.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

As vinhas da ilha Terceira (Biscoitos) possuem uma elevada infecção viral. No Quadro 2 evidencia-se a infecção detectada por vinha, nas sete vinhas amostradas, para os nove vírus testados.

Quadro 2 – Infecção detectada por ELISA, para nove vírus, nas sete vinhas nos Biscoitos (ilha Terceira, Açores).

De forma global a infecção total detectada nas sete vinhas em estudo é apresentada no Quadro 3. Os resultados dos testes serológicos efectuados em videiras de curraletas distintas mostraram que 100% das videiras amostradas estavam infectadas com o Vírus do enrolamento foliar da videira do tipo 3 (GLRaV-3). Outros vírus também presentes em grande número de videiras são o Vírus do urticado da videira (GFLV) e o Vírus do mosaico de Arabis (ArMV), existindo GFLV com maior incidência (55,3% e 36%, respectivamente). De destacar ainda a infecção por GVA (32,3%). Os restantes vírus prospectados foram também encontrados embora em muito menor percentagem. A infecção pelo Vírus do enrolamento foliar da videira do tipo 1 (GLRaV-1) parece ser esporádica pois apenas foi detectada em 2 videiras do total de 150 testadas.

Quadro 3 – Infecção total detectada por ELISA, nas cinco castas amostradas, nas sete vinhas nos Biscoitos (ilha Terceira, Açores).

Verifica-se que quando a análise de videiras infectadas é feita pelo valor conjunto das duas varas, a percentagem de infecção é superior à percentagem de infecção detectada quando se considera que uma vara é uma amostra, o que salienta a importância da amostragem alargada na planta (Quadro 3).

Quadro 4 – Infecção detectada por ELISA, em cinco castas, nas sete vinhas nos Biscoitos (ilha Terceira, Açores).

Estratégia de intervenção fitossanitária -As vinhas na ilha Terceira (Biscoitos) possuem uma elevada infecção viral e como todos os vírus da videira são transmitidos pelo material de propagação vegetativa é essencial que não seja usado material destas vinhas para re-enxertia e/ou para início de novas plantações.

É conhecido o efeito negativo, qualitativo e/ou quantitativo, de alguns vírus da videira nomeadamente dos vírus GLRaV-3 e GFLV, que se detectaram com maior incidência nos Biscoitos (Bovey et al., 1980; Pearson & Goheen, 1988; Santos et al., 2003).

O vírus do enrolamento da videira do tipo 3 (GLRaV-3), totalmente disseminado na região prospectada, afecta a qualidade das uvas pelo atraso que causa na maturação, acréscimo de acidez e decréscimo dos açúcares (logo reduzindo o etanol potencial do mosto) e redução das antocianinas e polifenóis, podendo levar a uma perda de pigmentação nos cachos na ordem de 50% nas castas tintas (Over de Linden & Chamberlain, 1970; Pearson & Goheen, 1988; Cabaleiro et al., 1999; Gugerli, 2003).

Para GLRaV-3, para além da transmissão por enxertia, há referência a várias espécies de cochonilhas vectores das famílias Coccidae e Pseudococcidae, nomeadamente Planococcus citri, P. ficus, Pseudococcus longispinus, Ps. viburni (=Ps. affinis), Ps. calceoridae, Ps. maritimus, Phenococcus aceris, Pulvinaria vitis, Heliococcus bohemicus e Parthenocanium corni (Tanne et al., 1989, Engelbrecht & Kasdorf, 1990; Belli et al., 1994; Golino et al., 1995; Cabaleiro & Segura, 1997; Petersen & Charles, 1997; Golino et al., 2000; Sforza & Greif, 2000; Golino et al., 2002, Gugerli, 2003; Sforza et al., 2003; Cid et al., 2006). Algumas destas espécies são também vectores de GVA nomeadamente Pseudococcuss longispinus, Planococcus ficus, Planococcus citri e Neopulvinaria innumerabilis (Roscieglione et al., 1983; Fortusini et al., 1997; Bunchen-Osmond; 2004). De salientar que a cochonilha escura, Pseudococcus viburni, foi identificada pela primeira vez na videira na ilha Terceira e na ilha do Pico em 2005 (Bettencourt et al., 2006) e está em estudo o seu potencial como espécie vector de isolados de GLRaV-3 e de GVA da ilha Terceira.

Assim, será aconselhável a prospecção de cochonilhas nas curraletas para averiguar a necessidade de intervenção cultural, nomeadamente eliminar e queimar, na altura da poda, os sarmentos atacados e, se viável, raspar o ritidoma das plantas afectadas. É de salientar que a presença na vinha de vários organismos auxiliares poderá levar à limitação natural das cochonilhas (Amaro, 2001).

Sabe-se há muito da existência de nemátodos vectores do vírus do urticado da videira nas ilhas de S. Miguel e Terceira nos Açores (Sequeira e Dias, 1964; Sturhan, 1973; Bravo, 1983; Lamberti et al., 1994). Por isso, não é de estranhar a grande dispersão de Nepovirus encontrada nas curraletas, embora não deva ser negligenciada a provável acção do Homem, pela utilização de material de enxertia contaminado.

É importante avaliar a actual incidência de nemátodes vectores de Nepovirus nos vinhedos da ilha Terceira. Admite-se que a presença destes vectores nos solos seja ainda uma constante existindo as condições de perpetuação da doença nomeadamente videiras infectadas e nemátodes vectores pelo que, e devido à importância da vitivinicultura na economia agrícola da região, torna-se fundamental lutar contra os nemátodes e contra o vírus.

A luta contra estes agentes não será fácil de realizar, principalmente quando se trata de culturas perenes, como a vinha. Relativamente à luta contra os nemátodes fitopatogénicos em geral, a luta química tem sido a mais utilizada, com 1,3-dicloropropeno em pré-plantação e apenas no ano da plantação (Lemos et al., 1997; Garrido, 2007). Contudo, esta forma de luta apresenta graves inconvenientes, nomeadamente o custo, a falta de especificidade dos nematodicidas e os efeitos secundários em relação ao Homem e outros animais e ao agro-ecossistema vinha. Além disso, estes nemátodes conseguem existir a profundidades de 3,5 metros, associados à raiz da videira.

A utilização de plantas com efeito alelopático é, numa óptica de viticultura sustentável, uma medida que poderá ser aplicada na região. Existem numerosas espécies de plantas que possuem compostos que podem ter um efeito nematodicida ou nematoestático (Jaeger, 2003). Esses compostos pertencem principalmente ao grupo dos isotiocianatos, glicósidos cianogénicos, poliacetilenos, alcalóides, ácidos gordos e derivados, terpenoides, fenólicos entre outros (Chitwood, 2002, Argentieri et al., 2008). Aballay e Insunza (2002) testaram o efeito alelopático de oito espécies de plantas em Xiphinema index, tendo verificado que nas parcelas onde Brassica napus foi utilizada como cultura de cobertura, e depois incorporada no solo, houve uma redução significativa da população de nemátodes. A acção alelopática de B. napus é devida à produção de glucosinolatos que quando são hidrolisados originam tiocianatos e isotiocianatos, entre outros compostos (Campos et al., 1994).

Assim, para a melhoria do estado sanitário e consequentemente da produtividade e rentabilidade das vinhas nos Açores, e neste caso particular nos Biscoitos, consideramos que deverá proceder-se à replantação das castas utilizadas, que terão que estar certificadas para a isenção de todos os vírus que constam da Directiva europeia (Directiva nº 2005/43/CE), onde estão incluídos nomeadamente os vírus GLRaV-3 e GFLV. Para que a replantação seja eficiente de modo a garantir que as castas não voltem a ser infectadas, deverá haver uma redução substancial dos vectores no solo antes de se efectuar esta replantação. Não é de aconselhar a utilização de nematodicidas de síntese, por todos os efeitos negativos já referidos. Parece-nos que uma opção sustentável será a utilização de Brassica napus como cultura de coberto vegetal, fazendo-se depois a sua incorporação. É necessário contudo determinar quais as variedades de B. napus mais indicadas para o clima e solo da região dos Biscoitos e que simultaneamente tenham teores elevados de glucosinolatos. Será também conveniente determinar qual a melhor época para efectuar a incorporação da cultura, tendo como objectivo o controlo dos nemátodes. Simultaneamente dever-se-á ainda estudar até que profundidades actuam estes compostos na luta contra os nemátodes. Só uma luta sustentável permitirá a eliminação gradual e eficaz destes vírus da cultura da vinha nos Açores e um aumento no rendimento dos vitivinicultores a médio prazo.

CONCLUSÕES

A elevada infecção viral detectada na região dos Biscoitos em 2006 está de acordo com idêntica prospecção realizada no ano anterior nas vinhas utilizadas para produção de VLQPRD nas Ilhas do Pico e Terceira (ver Bettencourt et al, este Congresso SPF).

Apesar de a maioria da transmissão das viroses na videira se dar devido à utilização indevida de bacelos e/ou garfos infectados, será também importante uma estratégia de protecção sustentável, tal como foi referido anteriormente, relativamente aos vectores conhecidos das duas viroses detectadas com maior incidência, nomeadamente cochonilhas das famílias Coccidae e Pseudococcidae (vectores de GLRaV-3, mas também de GLRaV-1, GVA, GVB) e nemátodes do género Xiphinema (vectores de GFLV e ArMV).

AGRADECIMENTOS

À Direcção Regional de Desenvolvimento Agrário (vinha 1), aos viticultores Euliotério Dias (vinha 2), Paulo Cota (vinha 3), João Gonçalves Pereira (vinha 4), Rui Manuel Cota (vinha 5), Manuel Rufino Simas (vinha 6) e Alcino Gomes Meneses (vinha 7) pela permissão de recolha de amostras nas respectivas vinhas. A Reinaldo Pimentel (Universidade dos Açores) pelo DVD com as fotogra fias de material com sintomas nas sete vinhas.

A Carlos da Assunção Martins (Universidade de Trás-os Montes e Alto Douro) pela execução laboratorial dos testes serológicos.

Trabalho parcialmente financiado pelo Projecto Interfruta-II (05/MAC/3.1/A4) no âmbito do INTERREG III-B Açores-Madeira-Canárias.

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¹ Universidade dos Açores, Departamento de Ciências Agrárias, Secção de Protecção de Plantas, Terra-Chã, 9702-851 Angra do Heroísmo, Terceira – Açores; silviabettencourt@yahoo.com; asimoes@mail.angra.uac.pt

² Universidade de Trás-os-Montes e Alto Douro, Departamento de Agronomia e CITAB, 5000-801 Vila Real, anazare@utad.pt

Comunicação apresentada no 5º Congresso da Sociedade Portuguesa de Fitopatologia, Coimbra, 2007

Recepção/Reception: 2008.03.27

Aceitação/Acception: 2008.10.14