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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Efeitos de Solanum sisymbriifolium e S. nigrum sobre o nemátode-das-lesões-radiculares, Pratylenchus goodeyi, parasita da bananeira]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effects of Solanum sisymbriifolium e S. nigrum on the rootlesion nematode, Pratylenchus goodeyi, parasite of banana]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The main goal of the present research was to help to devise a more sustainable banana production system by developing a control strategy for the root-lesion nematode, Pratylenchus goodeyi using Solanum sisymbriifolium Lam. and S. nigrum L. as green manure or biofumigants. Initially, a pathogenicity assay was performed and it has been demonstrated that, although P. goodeyi did reproduce on both plants, the reproduction factors (0.001) were sufficiently low to designate these plants as resistant or poor hosts. The addition of both Solanum species influenced banana plant growth. The reproduction of P. goodeyi was greatest on banana plants to which no Solanum species plant parts were added. S. sisymbriifolium water extracts were the most effective on P. goodeyi, mainly at the higher concentration (250 mg/ml). From the results obtained, S. sisymbriifolium and S. nigrum could be used as green manure and as biofumigants.]]></p></abstract>
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<kwd lng="pt"><![CDATA[Adubo verde]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"> <b>Efeitos de <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> sobre o nem&aacute;tode-das-les&otilde;es-radiculares,    <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>, parasita da bananeira </b></p>     <p align="center"><b>Effects of <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> on the rootlesion    nematode, <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>, parasite of banana</b> </p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <P align="center"> Margarida Pestana<sup><a href="#1">1</a></sup><a name="top1"></a>,    Manuela Gouveia<sup><a href="#2">2</a></sup><a name="top2"></a>, Isabel Abrantes<sup><a href="#3">3</a></sup><a name="top3"></a></P>     <P align="center">&nbsp;</P>     <p align="center"> <b>RESUMO</b> </p>     <p> O objectivo deste trabalho foi desenvolver uma estratégia de luta contra o    nemátodedas-lesões-radiculares, <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>, utilizando <i><i>Solanum</i>    sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> como adubo verde ou biofumigante. Inicialmente,    foram realizados ensaios de patogenicidade, tendo-se verificado que apesar de    <i>P. goodeyi</i> se ter reproduzido nas duas plantas, os factores de reprodução    foram muito baixos (0,001), podendo ser consideradas como resistentes ou, pelo    menos, hospedeiros fracos. A incorporação de qualquer uma das espécies de <i>Solanum</i>    no solo, com bananeiras infectadas com <i>P. goodeyi</i>, influenciou o crescimento    das bananeiras e a reprodução de <i>P. goodeyi</i> foi superior nas bananeiras    apenas infectadas com o nemátode. Os extractos aquosos de <i>S. sisymbriifolium</i>    foram os mais eficazes na mortalidade de <i>P. goodeyi</i> na concentração de    250 mg/ml. De acordo com os resultados obtidos, pode-se concluir que as plantas    de <i>S. sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> poderão ser utilizadas como adubo verde    e como biofumigante. </P>     <p> <b>Palavras-chave:</b> Adubo verde, bananeira, biofumigação, nemátode-das-lesões-radiculares,    <i>Solanum</i>. </P>     <p>&nbsp;</P>     <p align="center"> <b>ABSTRACT</b> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> The main goal of the present research was to help to devise a more sustainable    banana production system by developing a control strategy for the root-lesion    nematode, <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i> using <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i>    Lam. and <i>S. nigrum</i> L. as green manure or biofumigants. Initially, a pathogenicity    assay was performed and it has been demonstrated that, although <i>P. goodeyi</i>    did reproduce on both plants, the reproduction factors (0.001) were sufficiently    low to designate these plants as resistant or poor hosts. The addition of both    <i>Solanum</i> species influenced banana plant growth. The reproduction of <i>P.    goodeyi</i> was greatest on banana plants to which no <i>Solanum</i> species    plant parts were added. <i>S. sisymbriifolium</i> water extracts were the most    effective on <i>P. goodeyi</i>, mainly at the higher concentration (250 mg/ml).    From the results obtained, <i>S. sisymbriifolium</i> and <i>S. nigrum</i> could    be used as green manure and as biofumigants. </P>     <p> <b>Key-words</b>: Green manure, banana, biofumigation, root-lesion nematode,    <i>Solanum</i>. </P>     <p>&nbsp; </p>     <p><b>INTRODUÇÃO </b></p>     <p> Tendo em conta a importância socioeconómica e paisagística que a cultura da    bananeira (<i>Musa acuminata</i> Colla) tem para a Madeira, é fundamental encontrar    alternativas de produção, mais rentáveis para o agricultor e equilibradas do    ponto de vista ambiental. Nemátodes dos géneros <i>Helicotylenchus</i>, <i>Pratylenchus</i>    e <i>Rotylenchulus</i> são muito comuns em bananais da Região, principalmente <i>Pratylenchus</i>,    ocorrendo, muitas vezes, misturas de espécies destes géneros que podem originar    problemas muito graves, nomeadamente queda das plantas, diminuição da produção    e da qualidade, sobretudo nos anos mais ventosos (Reis &amp; Faria, 1990; Troccoli    et al, 1996; Pestana &amp; Cravo, 1999). A espécie <i>P. goodeyi</i> (Cobb) (Sher &amp;    Allen, 1953), tem sido considerada como a mais prejudicial à cultura da bananeira,    constituindo um grande problema para esta cultura nas Ilhas Canárias, em Chipre,    em Creta e em Taiwan (Gowen &amp; Quénéhervé, 1990; Stover &amp; Simmonds, 1987).    Nas bananeiras infectadas por estes nemátodes, as perdas de produção resultam    de uma diminuição do crescimento e desenvolvimento da planta, redução no tamanho    do cacho, aumento do período vegetativo, diminuição da vitalidade, queda das    plantas e diminuição na longevidade (Stoffelen <i>et al.</i>, 1999; Speijer <i>et al.</i>,    1999; Gold <i>et al.</i>, 2004). </P>     <p> As práticas agrícolas actuais visam reduzir a aplicação de produtos fitofarmacêuticos    e, assim, garantir uma melhor qualidade alimentar aliada a medidas mais protectoras    do ambiente e dos ecossistemas em geral. O manuseamento biológico do solo deverá    ser a base para a agricultura sustentável junta-mente com um conjunto de estratégias    e de medidas nas quais se incluem a rotação das culturas com plantas resistentes    ou pouco susceptíveis, a utilização de plantas com propriedades nematodicidas    e de plantas com a capacidade de atrair ou de repelir nemátodes como adubo verde    ou como cultura armadilha e a biofumigação, entre outras.</P>     <p> É sabido que os exsudatos das raízes de certas plantas actuam como atractivos    para alguns nemátodes, estimulando a eclosão (Scholte, 2000b; Kushida <i>et al.</i>,    2003). Vários estudos têm demonstrado que muitas plantas da família Solanaceae    apresentam elevada resistência a nemátodes-de-quisto da batateira e ainda a    capacidade de produzir compostos promotores da eclosão (Scholte, 2000a). Estes    factos fazem com que as Solanaceae tenham potencial para serem utilizadas como    cultura armadilha, estimulando a eclosão dos jovens do segundo estádio que invadem    as suas raízes e reduzindo o nível de infestação dos nemátodes no solo. </P>     <p> Com este trabalho pretendeu-se avaliar os efeitos das plantas <i><i>Solanum</i>    sisymbriifolium</i> <i>Lam. </i>e <i>S. nigrum</i> L. sobre <i>P. goodeyi</i>    e contribuir para o desenvolvimento de uma estratégia alternativa à aplicação    de nematodicidas, na luta contra as populações do nemátode-das-lesões-radiculares,    <i>P. goodeyi</i>, pela sua utilização. </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><b> MATERIAL E MÉTODOS </b></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> As plantas de <i>S. sisymbriifolium</i> cv. “Pion” e de <i>S. nigrum</i> foram obtidas a    partir de se-mentes cedidas por “Vandijke Semo Seed &amp; Services”, Holanda,    e de plantas de <i>S. nigrum</i> colhidas, com sistema radicular, na Serra de Água,    Madeira, e mantidas em laboratório. As plantas de bananeira cv. “Grande Anã”    foram produzidas por cultura <i>in vitro</i> no Microlab Madeira, Direcção Regional    de Agricultura e Desenvolvimento Rural e cedidas pelo Centro de Bananicultura,    Lugar de Baixo, Ponta do Sol. </P>     <p> Os nemátodes-das-lesões-radiculares, <i>P. goodeyi</i>, obtidos a partir de    amostras de raízes de bananeira, infestadas colhidas na parte Sul da Ilha da    Madeira, foram extraídos das raízes, através do método de maceração e crivagem    (Abrantes <i>et al.</i>, 1976; Hooper, 1986), e utilizados como inóculo, nas    diferentes experiências. </P>     <p>&nbsp; </P>     <p><b> Patogenicidade de <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i> a <i><i>Solanum</i>    sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> </b></p>     <p> Dez plantas de <i>S. sisymbriifolium</i> e dez de <i>S. nigrum</i>, com cerca    de 15 cm de altura, foram transferidas para vasos de plástico, com 2 l de capacidade,    com substrato esterilizado composto por turfa, areão e aparas de madeira decompostas,    na proporção de 1:1:1, ao qual foi adicionado 2 g.l<Sup>-1 </Sup>de adubo Floranid    permanente. A seguir, cinco plantas de <i>S. sisymbriifolium</i> e cinco de    <i>S. nigrum</i> foram inoculadas com 4 000 jovens e adultos de <i>P. goodeyi</i>    (Pi)/vaso. Cinco plantas de cada espécie não foram inoculadas, a fim de se verificar    a esterilidade do substrato. Quarenta dias após a inoculação, as plantas foram    desenvasadas, as raízes lavadas e pesadas. Para a determinação da densidade    populacional final (Pf), procedeu-se à extracção dos nemátodes do substrato    (250 cm<Sup>3</Sup>), pelo método da flutuação centrífuga em sacarose (Abrantes    <i>et al.</i>, 1976), e das raízes, como descrito anteriormente, tendo sido    calculado o factor de reprodução (Rf) a partir da expressão Rf=Pf/Pi (Nico <i>et    al.</i>, 2003). </P>     <p>&nbsp;</P>     <p> <b>Incorporação de <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i>    em bananeiras inoculadas com <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i> </b></p>     <p> As bananeiras, obtidas por cultura <i>in vitro</i>, foram colocadas nos vasos de    plástico com 30l de capacidade com solo franco-argiloso esterilizado e mantidas    ao ar livre. </P>     <p> Foram avaliados oito tratamentos, com cinco repetições por tratamento: </P>     <p> 1.Testemunha (Planta); </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> 2.Testemunha (Planta+nemátode); </p>     <p> 3.Planta+nemátode+<i>S. sisymbriifolium</i> (raízes); </p>     <p> 4.Planta+nemátode+<i>S. sisymbriifolium</i> (parte aérea); </p>     <p> 5.Planta+nemátode+<i>S. sisymbriifolium</i> (raízes e parte aérea); </p>     <p> 6.Planta+nemátode+<i>S. nigrum</i> (raízes); </p>     <p> 7.Planta+nemátode+<i>S. nigrum</i> (parte aérea); </p>     <p> 8.Planta+nemátode+<i>S. nigrum</i> (raízes e parte aérea). </p>     <p> A Testemunha (Planta) permitiu avaliar a esterilidade do substrato e a Testemunha    (Planta+nemátode) a viabilidade do inóculo. </P>     <p> As plantas dos tratamentos 2 a 8 foram inoculadas com 2 000 jovens e adultos    de <i>P. goodeyi</i>/vaso. </P>     <p> Dois meses após a inoculação dos nemátodes, as partes vegetativas de <i>S. sisymbriifolium</i>    e de <i>S. nigrum</i>, depois de ter sido determinado o peso das plantas e a proporção    raiz/parte aérea/planta, foram trituradas e incorporadas no solo, previamente    humedecido, nas quantidades seguintes: 85 g de raízes; 573 g de parte aérea;    e 480 g de raízes+parte aérea. Em relação à mistura raízes+parte aérea, 10%    do peso total correspondia ao peso de raízes. Nos primeiros dias, após a incorporação    do material vegetal no solo, as plantas de bananeira foram regadas de modo a    evitar a libertação dos gases tóxicos, essenciais para a eficácia do método.  </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Dois meses após a incorporação do material vegetal de <i>Solanum</i>, as plantas    de bananeira foram removidas e os parâmetros de crescimento, incluindo a altura    da planta, diâmetro ao nível do pseudocaule, peso fresco da parte aérea e das    raízes, foram registados. A seguir, as raízes foram lavadas, cortadas em fragmentos    com cerca de 1 cm e os nemátodes extraídos de uma amostra de 15 g de raízes    (De Waele &amp; Elsen, 2002). O número de nemátodes presentes no solo foi também    calculado a partir de uma amostra de solo de 250 cm<Sup>3 </Sup>/vaso. </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><b> Determinação da mortalidade de <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i> nos extractos    de <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> </b></p>     <p> Os extractos de <i>S. sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> foram obtidos adicionando 100    ml de água destilada esterilizada a 25 g de material vegetal (raízes, raízes+parte    aérea e parte aérea). As soluções resultantes foram consideradas como contendo    100 % da parte vegetal (concentração de 250 mg/ml) e foram feitas diluições    1:10 e 1:20 obtendo-se as concentrações 25 mg/ml e 12,5 mg/ml, respectivamente,    pela adição de água destilada esterilizada (Khurma &amp; Mangotra, 2004). </P>     <p> Transferiram-se 15 nemátodes para uma siracusa com 1 ml das diferentes concentrações    dos extractos das raízes+parte aérea, ou da parte aérea, ou das raízes de <i>S. sisymbriifolium</i> e de <i>S. nigrum</i>. A água destilada serviu como testemunha. Foram    feitas 5 repetições das concentrações de cada um dos extractos e da testemunha    (Insuza <i>et al.</i>, 2001) As contagens do número de nemátodes mortos foram efectuadas,    ao microscópio estereoscópico, todos os dias, durante 30 dias. A mortalidade    registada foi convertida em mortalidade cumulativa e corrigida pela Fórmula    de Abbott (Abbott, 1925). </P>     <p> Os valores obtidos da incorporação de <i>S. sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i>    no solo em vasos com bananeiras inoculadas com <i>P. goodeyi</i> e da mortalidade    do nemátode nos extractos das plantas de <i>Solanum</i> foram analisados estatisticamente    através do programa SPSS (Statistical Package for the Social Sciences), versão    1.4 para Windows. </P>     <p>&nbsp;</P>     <p> <b>RESULTADOS</b> </P>     <p><b> Patogenicidade de <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i> a <i><i>Solanum</i>    sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> </b></p>     <p> Em relação à determinação da reacção de <i>S. sisymbriifolium</i> e <i>S.    nigrum</i> ao nemátode <i>P. goodeyi</i>, verificou-se que os valores do Rf    foram muito baixos para ambas as espécies (Rf=0,001±0,001) (Rf médio ± DP, para    n=5) o que poderá ser um indicativo da não susceptibilidade destas plantas a    <i>P. goodeyi</i> (Quadro 1). Assim, existem fortes indicações para o facto    destas plantas não serem hospedeiras do nemátode, ou pelo menos, serem hospedeiros    fracos. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</P>     <p><b>Quadro 1</b> – Factor de reprodução (Rf) de <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>    em <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i>, 40 dias após a    inoculação com uma densidade populacional inicial (Pi) de 4 000 jovens e adultos    do nemátode/ planta. </P>     <p><img src="/img/revistas/rca/v32n2/32n2a16q1.jpg" width="654" height="150"></P>     
<p>&nbsp;</P>     <p><b>Efeito da incorporação de <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i> e <i>S.    nigrum</i> no solo em vasos de bananeira infectadas com <i><i>Pratylenchus</i>    goodeyi</i> </b></P>     <p> Como resultado da incorporação de <i>S. sisymbriifolium</i>, nos vasos com    bananeiras infectadas, verificou-se a existência de diferenças significativas    para a altura das plantas entre a testemunha com <i>P. goodeyi</i> (tratamento    2) e as plantas de bananeira em que as raízes ou parte aérea foram incorporadas    no solo (tratamentos 3 e 4); entre as plantas de bananeira em que as raízes+parte    aérea foram incorporadas no solo (tratamento 5) e aquelas em que as raízes foram    incorporadas no solo (tratamento 3) e ainda entre estas últimas e as plantas    testemunha sem nemátodes (tratamento 1) Constatando-se que as plantas da testemunha    <i>P. goodeyi</i> foram em média mais pequenas que as dos restantes tratamentos    enquanto as do tratamento 3 (raízes de <i>S. sisymbriifolium</i> incorporadas    no solo) foram as que atingiram maior altura (Quadro 2). Em relação ao diâmetro    ao nível do pseudocaule verificaram-se diferenças entre a testemunha com <i>P.    goodeyi</i> (tratamento 2) e as plantas de bananeira em que as raízes ou parte    aérea ou as raízes foram incorporadas no solo (Quadro 2). </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><b>Quadro 2</b> – Efeito de <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i> no crescimento    das plantas de bananeira 4 meses após a inoculação de 2 000 <i><i>Pratylenchus</i>    goodeyi</i>/planta. </P>     <p><img src="/img/revistas/rca/v32n2/32n2a16q2.jpg" width="652" height="225"></P>     
<p>&nbsp;</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Os valores do Rf do nemátode foram inferiores a 1 em todos os tratamentos.    Foram detectadas diferenças significativas entre as plantas inoculadas com <i>P.    goodeyi</i> (tratamento 2) e as plantas em que <i>S. sisymbriifolium</i> foi    incorporado no solo (tratamentos 3, 4 e 5) (Fig. 1). </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><img src="/img/revistas/rca/v32n2/32n2a16f1.jpg" width="339" height="197"></P>     
<p> <b>Figura 1</b> – Factor de reprodução (Rf) de <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>    nas plantas de bananeira, em que <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i> foi incorporada    no solo, 4 meses após a inoculação com uma densidade populacional inicial de    2 000 nemátodes/planta. Tratamentos: 2 Testemunha (Planta+nemátode); 3 Planta+nemátode+raízes;    4 Planta+nemátode+parte aérea e 5 Planta+nemátode+parte aérea e raízes (n=5,    p &lt; 0,05).</P>     <p>&nbsp;</P>     <p> Em relação a <i>S. nigrum</i> verificou-se existirem diferenças significativas    para a altura da planta entre as plantas de bananeira da testemunha com nemátodes    (tratamento 2) e as plantas em que o solo foi incorporado com as diferentes    partes de <i>S. nigrum</i> (tratamentos 6, 7 e 8) e ainda entre o tratamento    1 (testemunha sem nemátodes) e as plantas de bananeira em que o solo foi incorporado    com as raízes de <i>S. nigrum</i> (tratamento 6). Também neste caso, as plantas    de bananeira em que o solo foi incorporado com as raízes foram aquelas que atingiram    maior altura (Quadro 3). Em relação ao diâmetro ao nível do pseudocaule verificou-se    existirem diferenças entre a testemunha com nemátodes e as plantas de bananeira    em que o solo foi incorporado com a parte aérea ou com as raízes (Quadro 3)  </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><b>Quadro 3</b> – Efeito de <i>Solanum nigrum</i> no crescimento das plantas    de bananeira 4 meses após a inoculação de 2000 <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>/planta.  </P>     <p><img src="/img/revistas/rca/v32n2/32n2a16q3.jpg" width="653" height="231">  </P>     
<p>&nbsp; </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>O Rf de <i>P. goodeyi</i> só foi significativamente diferente entre a testemunha    com nemátodes (tratamento 2) e as plantas de bananeira em que o solo foi incorporado    com raízes+parte aérea de <i>S. nigrum</i> (tratamento 8) (Fig. 2). </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><img src="/img/revistas/rca/v32n2/32n2a16f2.jpg" width="393" height="197"></P>     
<p><b>Figura 2</b> – Factor de reprodução (Rf) de <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>    nas plantas de bananeira, em que <i>Solanum nigrum</i> foi incorporada no solo,    4 meses após a inoculação com uma densidade populacional inicial de 2000 nemátodes/planta.    Tratamentos: 2 Testemunha (planta+nemátode); 6 Planta+nemátode+raízes; 7 Planta+nemátode+parte    aérea e 8 Planta+nemátode+parte aérea e raízes (n=5, p &lt; 0,05). </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><b> Efeito dos extractos de <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i>    na mortalidade de <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i> </b></p>     <p> Ao fim de 10 dias, os extractos aquosos de <i>S. sisymbriifolium</i> afectaram    a mortalidade de <i>P. goodeyi</i>. Após 20 dias, a mortalidade cumulativa foi    superior em qualquer um dos extractos em relação à testemunha. </P>     <p> Verificou-se através da mortalidade cumulativa corrigida pela fórmula de Abbott    que o extracto mais concentrado das raízes+parte aérea de <i>S. sisymbriifolium</i>    foi o mais eficaz (Fig. 3). </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><img src="/img/revistas/rca/v32n2/32n2a16f3.jpg" width="422" height="222"></P>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p><b>Figura 3</b> – Mortalidade cumulativa (corrigida pela fórmula de Abbott)    de <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>, durante 30 dias de exposição ao extracto    aquoso de raízes+parte aérea de <i><i>Solanum</i> sisymbriifolium</i>. </P>     <p>&nbsp; </P>     <p>A mortalidade de <i>P. goodeyi</i> foi ligeiramente afectada pelos extractos    de <i>S. nigrum</i>. A eficácia dos extractos das raízes+parte aérea de <i>S.    nigrum</i> na mortalidade do nemátode <i>P. goodeyi</i>, dada pela mortalidade    cumulativa corrigida pela fórmula de Abbott, não foi relevante em relação à    testemunha (Fig. 4). </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><img src="/img/revistas/rca/v32n2/32n2a16f4.jpg" width="424" height="224"></P>     
<p><b>Figura 4</b> – Mortalidade cumulativa (corrigida pela fórmula de Abbott)    de <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>, durante 30 dias de exposição ao extracto    aquoso de raízes+parte aérea de <i>Solanum nigrum</i>. </P>     <p>&nbsp;</P>     <p> <b>DISCUSSÃO</b> </p>     <p> Ambas as plantas apresentaram valores do Rf do nemátode muito baixos, o que    mostrou que as duas espécies de <i>Solanum</i> não são susceptíveis ao nemátode, ou    seja, <i>P. goodeyi</i> não se reproduziu nestas plantas como foi comprovado pelo baixo    número de nemátodes encontrados no substrato e nas raízes e ausência de necroses    nas raízes. </P>     <p> Deste modo, pensa-se que se pode afastar a hipótese de qualquer uma das plantas    ter efeito como cultura armadilha, à semelhança do que acontece com os nemátodes-de-quisto    do género <i>Globodera</i>, uma vez que não parecem atrair <i>P. goodeyi</i> para as suas    raízes. No entanto, fica em aberto a possibilidade de serem usadas como adubo    verde ou biofumigante. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> As diferenças encontradas em relação aos parâmetros de crescimento, nomeadamente    à altura das plantas e ao diâmetro do pseudocaule, mostraram que as plantas    de bananeira inoculadas com o nemátode (tratamento 2), não cresceram tanto como    as dos tratamentos em que partes de <i>S. sisymbriifolium</i> e S. nigrum foram    incorporadas no solo. Assim, qualquer uma das plantas de <i>Solanum</i> influenciou,    de forma positiva, o crescimento das plantas de bananeira, principalmente aquelas    em que o solo foi incorporado com as raízes de <i>S. sisymbriifolium</i> e de    <i>S. nigrum</i>. </P>     <p> Os extractos aquosos das plantas de <i>S. sisymbriifolium</i> mais eficientes    na mortalidade de <i>P. goodeyi</i> foram os extractos mais concentrados (250    mg/ml), principalmente aqueles provenientes das raízes+parte aérea e das raízes.    A parte aérea, só por si, não afectou tanto os nemátodes, o que parece estar    em conformidade com os resultados do ensaio dos efeitos das plantas de <i>Solanum</i>    no crescimento das bananeiras e reprodução do nemátode. Em relação aos extractos    aquosos de <i>S. nigrum</i>, os resultados mostraram que não existe grande diferença    entre a mortalidade observada nos extractos das raízes+parte aérea, da parte    aérea e das raízes e a registada na testemunha. Estes extractos não foram eficientes    na mortalidade de <i>P. goodeyi</i> pelo menos para as concentrações utilizadas.  </P>     <p> A utilização de <i>S. sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> nas entrelinhas das plantas    de bananeira pode melhorar o equilíbrio biológico do solo, em torno das raízes    da bananeira, inibindo a reprodução de <i>P. goodeyi</i>, proporcionando o aparecimento    de outros microrganismos que com ele competem, favorecendo e protegendo as plantas    de bananeira que, desta forma, irão produzir mais, uma vez que se provou que    qualquer uma das plantas de <i>Solanum</i> não é hospedeira do nemátode <i>P. goodeyi</i>    e que ambas promovem o crescimento das plantas de bananeira. </P>     <p> As plantas <i>S. sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i> podem contribuir para um maior equilíbrio    dos organismos presentes no solo e, assim, terem um efeito benéfico como adubo    verde, principalmente pela incorporação no solo das raízes ou das raízes+parte    aérea. </P>     <p> De acordo com os resultados obtidos, <i>S. sisymbriifolium</i> e <i>S. nigrum</i>    poderão ser utilizados como biofumigantes em campos de bananeira infestados    com <i>P. goodeyi</i>, o que será importante para os bananais convencionais    em que os desequilíbrios biológicos do solo são mais frequentes e evidentes,    quando comparados com os convertidos ao modo de produção biológico.</P>     <p> A aplicação destas plantas parece de todo o interesse, sobretudo de <i>S.    nigrum</i> existente na Região espontaneamente entre as bananeiras e de grande    abundância, tornando-se um recurso de fácil acesso para os agricultores e de    aplicação simples. </P>     <p> Tanto a biofumigação como a adubação em verde são recursos que podem ser facilmente    utilizados nos bananais e que podem e devem ser utilizados, em simultâneo, sobretudo    nos bananais mais abertos e expostos. </P>     <p>&nbsp;</P>     <p><b> REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS </b></p>     <p> Abbott, W.S. (1925) - A method of computing the effectiveness of an insecticide.    <i>Journal of Economic Entomology </i>18: 265-267. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p> Abrantes, I.M. de O.; Morais, M.N. de; Paiva, I.M.P. de F.R. &amp; Santos,    M.S.N. de A. (1976) - Análise nematológica de solos e plantas. <i>Ciência Biológica</i>    (Portugal) 1: 139-155. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000103&pid=S0871-018X200900020001600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p> De Waele, D. &amp; Elsen, A. (2002) -Migratory endoparasites <i>Pratylenchus</i>    and Radopholus species. <i>In</i>: Starr, J.L.; Cook, R. &amp; Bridge, J. (Eds.)    <i>Plant Resistance to parasitic nematodes</i>. CAB International, Wallingford,    U.K., pp. 175-206. </P>     <p> Gold, C.S.; Kagezi, G.H.; Night, G. &amp; Ragama, P.E. (2004) - The effects    of banana weevil, Cosmopolites sordidus (Germar), damage on highland banana    growth, yield and stand duration in Uganda. <i>Annals of Applied Biology</i>    145: 263-269. </P>     <p> Gowen, S. &amp; Quénéhervé, P. (1990) - Nematode Parasites of bananas, plantains    and abaca. <i>In</i>: Luc, M.; Sikora, R.A. &amp; Bridge, J. (Eds.) <i>Plant    Parasitic Nematodes in subtropical and tropical agriculture</i>. CAB International,    Wallingford, U.K., pp. 431-460. </P>     <p> Hooper, D.J. (1986) - Extraction of nematodes from plant material. <i>In</i>:    Southey, J.F. (Ed.) <i>Laboratory Methods for Work with Plant and Soil Nematodes.    Her Majesty’s Stationery Office</i>, London, U.K., pp. 51-58. </P>     <p>Insunza, V.; Aballay, E. &amp; Macaya, J. (2001) -Nematicidal activity of aqueous    plant extracts on Xiphinema index. <i>Nematologia Mediterranea </i>29: 35-40.  </P>     <p> Khurma, U.R. &amp; Mangotra, A. (2004) - Sreening of some leguminosae seeds    for nematidicidal activity. <i>South Pacific Journal of Natural Science</i>    22: 50-52. </P>     <p> Kushida, A.; Suwa, N.; Ueda, Y. &amp; Momota, Y. (2003) -Effects of Crotalaria    juncea and C. spectabilis on hatching and population density of the soybean    cyst nematode, Heterodera glycines (Tylenchida: Heteroderidae). <i>Applied Entomology    and Zoology</i> 38: 393. </P>     <p> Nico, A.I.; Jiménez-Diaz, R.M. &amp; Castillo, P. (2003) -Host suitability    of the olive cultivars Arbequina and Picual for plant-parasitic nematodes. <i>Journal    of Nematology</i> 35:29-34. </P>     <p> Pestana, M. &amp; Cravo, D. (1999) - Nemátodes das fruteiras tropicais e subtropicais.    <i>In</i>: Carvalho, J.P. de (Ed.) <i>Contribuição para a Protecção Integrada    na Região Autónoma da Madeira</i>. Secretaria Regional de Agricultura, Florestas    e Pescas, Funchal, Portugal, pp. 301-306. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> Reis, L.G.L. &amp; Faria, A. (1990) – Plant-parasitic nematodes associated    with bananas in Madeira Island. <i>The Second International Nematology Congress    (abstracts)</i>. August, Veldhoven, Netherland, pp. 385. </P>     <p> Scholte, K. (2000 a) - Screening of non-tuber bearing Solanaceae for resistance    to and induction of juvenil hatch of potato cyst nematodes and their potencial    for trap cropping. Annals of Applied Biology 136: 239-246. </P>     <p> Scholte, K. (2000 b) -Growth and development of plants with potencial for    use trap crops for potato cyst nematodes and their effects on the numbers of    juveniles in cysts. <i>Annals of Applied Biology</i>, 137: 031-042. </P>     <p> Sher, S. A. &amp; Allen, M. W. (1953) - Revision of the genus <i>Pratylenchus</i>    (Nematoda: Tylenchidae). University of California Publications in <i>Zoology</i>    57: 441-469. </P>     <p> Speijer, P.R.; Kajumba, C. &amp; Ssango, F. (1999) - East African highland    banana production as influenced by nematodes and crop management in Uganda.    <i>International Journal of Pest Manegment</i> 45: 41-49.</P>     <p> Stoffelen, R.; Jimenez, M.I.; Dierckxsens, C.; Tam, V.T.T.; Swennen, R. &amp;    De Waele, D. (1999) -Effect of time and inoculum density on the reproductive    fitness of <i>Pratylenchus</i> coffeae and Radopholus similis populations on    carrot disks. <i>Nematology</i> 1: 243-250. </P>     <p> Stover, R. H. &amp; Simmonds, N. W. (1987) -Bananas. Longman Scientific &amp;    Technical, Harlow, Essex, U.K., 468 pp. (<i>cit</i> Pinochet <i>et al.</i>,    1995). </P>     <p> Troccoli, A.; Pestana, M.; Vovlas, N.; Abrantes, I.M.O. &amp; Santos, M.S.N.    de A. (1996) -Endoparasitic nematode species, <i><i>Pratylenchus</i> goodeyi</i>,    from banana root in Madeira island orchards. <i>II Symposium “Fauna and Flora    of Atlantic Island (abstracts). </i>February, Las Palmas de Gran Canaria, pp.    227. </P>     <p>&nbsp;</P>     <p> <Sup><a name="1"></a><a href="#top1">1</a> </Sup>Laboratório de Qualidade    Agrícola, RAM, Funchal. E-mail: <a href="mailto:margaridacorreia.sra@gov-madeira.pt">margaridacorreia.sra@gov-madeira.pt</a>;</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <a name="2"></a><a href="#top2"><Sup>2</Sup></a><Sup> </Sup>Centro de Ciências    da Vida, UMa, Funchal. E-mail: <a href="mailto:mgouveia@uma.pt">mgouveia@uma.pt</a>;  </P>     <p><Sup><a name="3"></a><a href="#top3">3</a> </Sup>Instituto do Mar - Centro    do Mar e Ambiente, Departamento de Ciências da Vida, UC, Coimbra. E-mail: <a href="mailto:isabel.abrantes@zoo.uc.pt">isabel.abrantes@zoo.uc.pt</a>  </P>     <p> Comunicação apresentada no 5ª Congresso da Sociedade Portuguesa de Fitopatologia,    Coimbra 2007 </P>     <p>&nbsp;</P>     <p> <b>Recepção/Reception: 2008.02.19 </b></P>     <p><b>Aceitação/Acception: 2008.11.24 </b></P>      ]]></body><back>
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